暑假我想使用植物组织培养技术,以李子树为例,用它的叶或其它效果更好的部位培养另一株能结同样好吃的果子的李树该怎么弄?

暑假我想使用植物组织培养技术,以李子树为例,用它的叶或其它效果更好的部位培养另一株能结同样好吃的果子的李树该怎么弄?
暑假我想使用植物组织培养技术,
以李子树为例,用它的叶或其它效果更好的部位培养另一株能结同样好吃的果子的李树该怎么弄?

暑假我想使用植物组织培养技术,以李子树为例,用它的叶或其它效果更好的部位培养另一株能结同样好吃的果子的李树该怎么弄?
植物组织培养的大致过程是：在无菌条件下,将植物器官或组织（如芽、茎尖、根尖或花药）的一部分切下来,用纤维素酶与果胶酶处理用以去掉细胞壁,使之露出原生质体,然后放在适当的人工培养基上进行培养,这些器官或组织就会进行细胞分裂,形成新的组织.不过这种组织没有发生分化,只是一团薄壁细胞,叫做愈伤组织.在适合的光照、温度和一定的营养物质与激素等条件下,愈伤组织便开始分化,产生出植物的各种器官和组织,进而发育成一棵完整的植株.
大概总结为 取材→去壁→脱分化→再分化→培养.
问题是楼主有这些植物组培的条件么.再说李子树那么大,一般高达8米.纯粹实验室内培养肯定不够,楼主要把它先培养成树苗再移植到室外土壤中才行.还有加上李子树从生长到成熟结果也要一段时间.暑假是不够的.楼主先用萝卜块试一试吧.

植物组织培养的步骤
一、培养基配制　
现以MS培养基为例介绍配置培养基的主要过程。 　　
1、配制几种母液 　　
（1）配制MS大量元素母液 　　一般将大量元素分别配制成100倍的母液，使用时再分别稀释100倍。 　　分别称取 　　NH4NO3 165g KH2PO4 17g 　　KNO3 190g CaCl2·2H2O 44g 　　MgSO4·7H2O 37g ...

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植物组织培养的步骤
一、培养基配制　
现以MS培养基为例介绍配置培养基的主要过程。 　　
1、配制几种母液 　　
（1）配制MS大量元素母液 　　一般将大量元素分别配制成100倍的母液，使用时再分别稀释100倍。 　　分别称取 　　NH4NO3 165g KH2PO4 17g 　　KNO3 190g CaCl2·2H2O 44g 　　MgSO4·7H2O 37g 　　各自配成1L的母液。倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。 　　（2）配制MS微量元素母液 　　一般将微量元素配制成100倍母液。 　　依次称取 　　KI 0.083g Na2MoO4·2H2O 0.025g 　　H3BO3 0.62g CuSO4·5H2O 0.0025g 　　MnSO4·H2O 1.69g CoCl2·6H2O 0.0025g 　　ZnSO4·7H2O 0.86g 　　配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。 　　CuSO4·5H2O和CoCl2·6H2O 由于称取量很小，如果天平精确度没有达到万分之一，可先配成调整液。 　　分别称取 　　CuSO4·5H2O 0.05g CoCl2·6H2O 0.05g 　　各自配成100ml的调整液，然后取5ml就还有0.0025g的量。 　　
（3）配制MS有机母液 　　一般配制成100倍MS有机母液。 　　依次称取 　　肌醇 10g 盐酸硫胺素（VB1） 0.01g 　　烟酸 0.05g 甘氨酸 0.2g 　　盐酸吡哆醇（VB6） 0.05g 　　配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。 　　
（4）配制MS铁盐母液 　　一般配制成100倍MS铁盐母液。 　　依次称取 　　EDTA二钠 3.73g FeSO4·7H2O 2.78g 　　配成1L母液，倒入1L试剂瓶中，存放于冰箱中。 　　所以MS母液有5种大量元素母液，加上MS微量元素母液、MS有机母液和MS铁盐母液，共8种母液。 　　激素母液的配制 　　各种生长素和细胞分裂素要单独配制，不能混合在一起，生长素类一般要先用少量95%的酒精或1当量的NaOH溶解，细胞分裂素一般要先用1当量的盐酸溶解，然后再加蒸馏水定容。一般取100mg配成100ml母液。 　　
2、配制培养基 　　以配置1L MS培养基为例，按顺序进行如下操作： 　　
（1）先在烧杯中放入一些蒸馏水。 　　（2）分别取上面八种母液10ml倒入。 　　（3）一般称取30g蔗糖倒入，搅拌溶解。 　　（4）加蒸馏水用量筒定溶至1L。 　　（5）按设计好的方案添加各种激素，由于激素的用量很小，而且激素对组培植物的生长至关重要。所以有条件的话最好用微量可调移液器吸取，减少误差。 　　（6）用精密试纸或酸度计调整PH至5.7-5.8。（有条件的话使用酸度计，比较精确） 可配1当量的HCL和1当量的NaOH用来调溶液PH值。 　　1当量HCL配制：用量筒量取8.3ml配成100ml溶液。 　　1当量NaOH配制：称取NaOH 4g 配成100ml溶液。 　　（7）称取5g左右琼脂粉（质量好的琼脂粉),倒入上面配好的溶液中，放在电炉上加热至沸腾，直到琼脂粉熔化。 　　（8）稍微冷却后，分装入培养容器中。无盖的培养容器要用封口膜或牛皮纸封口，用橡皮筋或绳子扎紧。 　　（9）放入消毒灭菌锅灭菌，灭菌20分钟左右。 　　（10）灭菌后从灭菌锅中取出培养基，平放在实验台上令其冷却凝固。
二、灭菌
　　灭菌是组织培养重要的工作之一。
　　1、培养基用湿热灭菌 　　培养基在制备后的24小时内完成灭菌工序。高压灭菌的原理是：在密闭的蒸锅内，其中的蒸汽不能外溢，压力不断上升，使水的沸点不断提高，从而锅内温度也随之增加。在0.1MPa的压力下，锅内温度达121℃。在此蒸汽温度下，可以很快杀死各种细菌及其高度耐热的芽孢。 　　注意完全排除锅内空气，使锅内全部是水蒸气，灭菌才能彻底。高压灭菌放气有几种不同的做法，但目的都是要排净空气，使锅内均匀升温，保证灭菌彻底。常用方法是：关闭放气阀，通电后，待压力上升到0.05MPa时，打开放气阀，放出空气，待压力表指针归零后，再关闭放气阀。 　　关阀再通电后，压力表上升达到0.1MPa时，开始计时，维持压力0.1-0.15MPa，20分钟。 　　按容器大小不同，保压时间有所不同，见表。该表所列数字是彻底灭菌很保险的数字，如果容器体积较大，但是放置的数量很少，也可以减少时间。
三、接种
　　无菌操作可按以下步骤进行： 　　（1）在接种4小时前用甲醛熏蒸接种室，并打开其内紫外线灯进行杀菌； 　　（2）在接种前20分钟，打开超净工作台的风机以及台上的紫外线灯； 　　（3）接种员先洗净双手，在缓冲间换好专用实验服，并换穿拖鞋等； 　　（4）上工作台后，用酒精棉球搽拭双手，特别是指甲处。然后搽拭工作台面； 　　（5）先用酒精棉球搽拭接种工具，再将镊子和剪刀从头至尾过火一遍，然后反复过火尖端处，对培养皿要过火烤干； 　　（6）接种时，接种员双手不能离开工作台，不能说话、走动和咳嗽等； 　　（7）接种完毕后要清理干净工作台，可用紫外线灯灭菌30分钟，若连续接种，每5天要大强度灭菌一次。 　　接种是将已消毒好的根、茎、叶等离体器官，经切割或剪裁成小段或小块，放入培养基的过程。现将接种前后的程序连贯地介绍。 　　
无菌接种步骤： 　　（1）将初步洗涤及切割的材料放入烧杯，带入超净台上，用消毒剂灭菌，再用无菌水冲洗，最后沥去水分，取出放置在灭过菌的纱布上或滤纸上。 　　（2）材料吸干后，一手拿镊子、一手拿剪刀或解剖刀，对材料进行适当的切割。如叶片切成0.5cm平方的小块；茎切成含有一个节的小段。微茎尖要剥成只含1-2片幼叶的茎尖大小等。在接种过程中要经常灼烧接种器械，防止交叉污染。 　　（3）用灼烧消毒过的器械将切割好的外植体插植或放置到培养基上。具体操作过程（以试管为例）是：先解开包口纸，将试管几乎水平拿着，使试管口靠近酒精灯火焰，并将管口在火焰上方转动，使管口里外灼烧数秒钟。若用棉塞盖口，可先在管口外面灼烧，去掉棉塞，再烧管口里面。然后用镊子夹取一块切好的外植体送入试管内，轻轻插入培养基上。若是叶片直接附在培养基上，以放1-3块为宜。至于材料放置方法除茎尖、茎段要正放（尖端向上）外，其他尚无统一要求。接种完后，将管口在火焰上再灼烧数秒种。并用棉塞，塞好后，包上包口纸，包口纸里面也要过火。
四、培养
　　 　　1、培养方法 　　（1）固体培养法 　　即用琼脂固化培养基来培养植物材料的方法。是现在最常用的方法。虽然该方法设备简单，易行，但养分分布不均，生长速度不均衡，并常有褐化中毒现象发生。 　　（2）液体培养法 　　即用不加固化剂的液体培养基培养植物材料的方法。由于液体中氧气含量较少，所以通常需要通过搅动或振动培养液的方法以确保氧气的供给，采用往复式摇床或旋转式摇床进行培养，其速度一般为50-100r/min，这种定期浸没的方法，既能使培养基均一，又能保证氧气的供给。 　
　2、培养步骤 　　（1）初代培养 　　初代培养旨在获得无菌材料和无性繁殖系。即接种某些外植体后，最初的几代培养。初代培养时，常用诱导或分化培养基，即培养基中含有较多的细胞分裂素和少量的生长素。初代培养建立的无性繁殖系包括：茎梢、芽丛、胚状体和原球茎等。
五、驯化移栽
　　试管苗移栽是组织培养过程的重要环节，这个工作环节做不好，就会造成前功尽弃。为了做好试管苗的移栽，应该选择合适的基质，并配合以相应的管理措施，才能确保整个组织培养工作的顺利完成。 　 　　1、移栽用基质和容器 　　　　（1）河砂 　 　　（2）草炭土 　　　（3）腐殖土 　（4）容器 　　 　　2、移栽前的准备 　　移栽前可将培养物不开口移到自然光照下锻炼2-3天，让试管苗接受强光的照射，使其长得壮实起来，然后再开口练苗1-2天，经受较低湿度的处理，以适应将来自然湿度的条件。 　　3、移栽和幼苗的管理 　　从试管中取出发根的小苗，用自来水洗掉根部粘着的培养基，要全部除去，以防残留培养基滋生杂菌。但要轻轻除去，应避免造成伤根。移植时用一个筷子粗的竹签在基质中插一小孔，然后将小苗插入，注意幼苗较嫩，防止弄伤，栽后把苗周围基质压实，栽前基质要浇透水。栽后轻浇薄水。再将苗移入高湿度的环境中。保证空气湿度达90%以上。 　　（1）保持小苗的水分供需平衡。在移栽后5-7天内，应给予较高的空气湿度条件，使叶面的水分蒸发减少，尽量接近培养瓶的条件，让小苗始终保持挺拔的状态。保持小苗水分供需平衡首先营养钵的培养基质要浇透水，所放置的床面也要浇湿，然后搭设小拱棚，以减少水分的饿蒸发，并且初期要常喷雾处理，保持拱棚薄膜上有水珠出现。当5-7天后，发现小苗有生长趋势，可逐渐降低湿度，减少喷水次数，将拱棚两端打开通风，使小苗适应湿度较小的条件。约15天以后揭去拱棚的薄膜，并给予水分控制，逐渐减少浇水，促进小苗长得粗壮。 　　（2）防止菌类滋生。由于试管苗原来的环境是无菌的，移出来以后难以保持完全无菌，因此，应尽量不使菌类大量滋生，以利成活。所以应对基质进行高压灭菌或鸿烤灭菌。可以适当使用一定浓度的杀菌剂以便有效的保护幼苗，如多菌灵、托布津，浓度800-1000倍，喷药宜7-10天一次。在移苗时尽量少伤苗，伤口过多，根损伤过多，都是造成死苗的原因。喷水时可加入0.1%的尿素，或用1/2MS大量元素的水溶液作追肥，可加快苗的生长与成活。 　　（3）一定的温、光条件。 试管苗移栽以后要保持一定的温光条件，适宜的生根温度是18-20℃，冬春季地温较低时，可用电热线来加温。温度过低会使幼苗生长迟缓，或不易成活。温度过高会使水分蒸发，从而使水分平衡受到破坏，并会促使菌类滋生。 　　另外在光照管理的初期可用较弱的光照，如在小拱棚上加盖遮阳网或报纸等，以防阳光灼伤小苗和增加水分的蒸发。当小植株有了新的生长时，逐渐加强光照，后期可直接利用自然光照。促进光合产物的积累，增强抗性，促其成活。 　　（4）保持基质适当的通气性。 要选择适当的颗粒状基质，保证良好的通气作用。在管理过程中不要浇水过多，过多的水应迅速沥除，以利根系呼吸。 　　综上所述，试管苗在移栽的过程中，只要把水分平衡、适宜的介质、控制杂菌和适宜的光、温条件控制好，试管苗是很容易移栽的。

收起

我不知道你说得李子是那种，就那欧李来说吧，欧李的组培所用的外植体一般就是茎尖和茎段两种，一、茎尖为外植体
1、外植体消毒，升汞，接入启动培养基一般用MS+0.25 mg/l 6-BA+0.1mg/l NAA
2、增殖培养：可用MS+0.5 mg/l 6-BA+0.05mg/l NAA 可以自行调节
3生根：1/2MS+0.4mg/l NAA...

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我不知道你说得李子是那种，就那欧李来说吧，欧李的组培所用的外植体一般就是茎尖和茎段两种，一、茎尖为外植体
1、外植体消毒，升汞，接入启动培养基一般用MS+0.25 mg/l 6-BA+0.1mg/l NAA
2、增殖培养：可用MS+0.5 mg/l 6-BA+0.05mg/l NAA 可以自行调节
3生根：1/2MS+0.4mg/l NAA

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